一、基本原理
悬浮液静止不动时,由于重力场的作用悬粒逐渐沉降,粒子越重,下沉越快,反之,密 度比液体为小的粒子就向上浮。微粒在重力场中移动的速度与微粒的密度、大小和形状有关,并且又与重力场的强度和液体的粘度有关。像红细胞大小、直径为数微米的微粒可以 利用重力作用来观察它们的沉降速度。蛋白质分子则不可能仅仅利用重力作用来观察它 们的沉降速度,因为蛋白质分子微粒越小,沉降越慢,而扩散现象越严重,所以需要利用高 速离心方法以产生强大的离心力场。离心力场(G)可以由离心机转头的角速度(u>,以弧度 /s表示)和微粒离旋转轴的辐射距离(r,以cm表示),按如下方程式来决定:G=0)V
因为转头旋转1次等于2;r弧度,所以转头的角速度以每分钟旋转的次数(转数/
mm)可以表示为因此,离心力场也可以表示为:
离心力场G=(2jtX转数/s)2r。例如,如果超速离心机的转速为60 000转/min(即1 000 转/s),而离心池中心至转轴中心的距离为6cm,如下式所示, 这表明在此情况下所产生的离心力比重力大24万倍,利用这样大的离心力,就有可 能研究胶体粒子大小范围内的各种微粒和分子的沉降行为。在报告特殊颗粒离心分离的 条件时,转头的转速,半径的大小,转头运转的时间都必须表示出来。但通常记录的是以旋 转时离心管中液柱的平均半径(即从离心管液柱的中间到旋转轴的距离)而计算到的、以 g为倍数的离心力。在实际工作中,为了方便起见,不需要计算,从Dohe与Cotyias制作 的与转头速度和半径相对应的尺的列线图中得知此三者之二,就可以推算另一数值, 往往都是知道每分钟的转速(r/min)与旋转半径,然后在此列线图中即可查出相对 离心力(g)。图3-13-13所示,如已知离心机的每分钟转速和旋转半径,即可查出相对离心 力,例如每分钟转速为3 000,旋转半径为6cm,则相对离心力约为600g。
在离心分析中,经常遇到沉降系数这个概念。沉降系数是指单位离心力作用下颗粒沉 降的速度,用表示,简化为5,数量单位为S。1个S等于1X1(T13s。近来常用沉 降系数来描述生物高分子或亚细胞器的大小。蛋白质的沉降系数一般在1S〜200S单位 之间。
沉降速度是指在强大离心力作用下,单位时间内物质运动的距离。
超速离心法分为两大类型,一类为制备性超速离心,一类为分析性超速离心。
二、制备性超速离心
(―)差速分级离心法
差级分速离心法亦称差级离心法,是最常用的离心法。这个方法是建立在不同大小和 密度的颗粒在沉降速度上存在着差别的基础上。被分离的物质通过离心力逐渐增加(分 步)施加的离心场可以分成很多组分。每一步的离心场力被选择到能使一种特殊类型的物 质在预定的离心时间内沉降以得到一个“沉淀”,每一步末了,分离沉淀与“上清液”,沉淀 经过几次“洗涤”后,最后得到一个“纯”的部分。在这种离心中,离心后一般以倾倒的办法 把上清液与沉淀分开,将分离的上清液再加高转速进行离心,分离出 第二部分沉淀,如此 往复加高转速,逐级分离出所需要的物质。这种差速分级离心法对于从匀浆的组织中分离 细胞器可能是一种最常用的方法。对于分离在大小和密度上有显著数量级差别的细胞器, 这种方法是最成功的。在蛋白质的提取纯化中,往往也采用差速分级离心法,将匀浆中不 需要的组分去掉,得上清液后再用其他方法纯化之,因此在蛋白质溶液的纯化中首先就用 此方法,然后再用层析法与电泳法等纯化之。差速分级离心法如图3-13-13所示。
提高分离能力,乃发展了另 一重要离心分离法,即区带离 心法。区带离心法又分为三种 类型:①差速区带离心法;②等 密度区带离心法;③平衡等密 度区带离心法。 (二)差速区带离心法 此法亦称为分级区带离心 法,是由于不同颗粒的不同沉 降速度而分层,故称为差速区 带离心法。为了得到高的分离 能力,在区带离心法的运用中 需要在离心液内形成密度梯 度。常用的梯度溶液为蔗糖密 度梯度溶液,其主要目的是为 了稳定离心液,避免产生对流, 因为对流会由于局部的温度变 化或机械振动而引起干扰,影 响分离效果。差速区带离心时 需要使离心管成水平位置(垂 直于转子轴),离心管内溶液要 生形成密麽梯麽.例加加入港应注意的是,差速分级离心沉淀法所分离的组分往往不是均一的,为了克服这一缺
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RCF(g) |
r/min |
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30: |
7000 _ |
卜700000 |
5000: |
r50000 |
- |
6000- |
-600000 |
4500 |
-45000 |
25三 |
5000: |
:500000 |
4000 -= |
40000 |
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4000 : |
-400000 |
||
: |
3000 : |
:300000 |
3500-= |
-35000 |
20 1 |
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19^ |
2000- |
-200000 |
3000 : |
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18- |
— 30000 |
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17- |
1500- |
-150000 |
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16- |
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15- |
1000- |
-100000 |
2500; |
;25000 |
14- |
800: |
-80000 |
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13- |
m- |
-70000 60000 |
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12- |
500- |
-50000 |
2000 二 |
-20000 |
11- |
400- |
;40000 |
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10- |
300- |
:30000 |
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9 : |
200 - |
20000 |
1500 : 1400 - |
L15000 -14000 |
8 - |
150 - |
-15000 |
1300 - |
-13000 |
7- |
100 : 80 - |
-10000 |
1200- |
-12000 |
- |
:8000 |
1100- |
-11000 |
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6 - |
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:騮 |
1000 - |
:10000 |
- |
50 : |
:5000 |
900 { |
;9000 |
5- |
40 |
:4000 |
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30 : |
- 3000 |
800 - |
:8000 |
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4- |
20 - |
2000 |
700 - |
.7000 |
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15 - |
-1500 |
600 - |
-6000 |
3- |
10 - |
-1000 |
500 - |
5000 |
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糖溶液使其浓度自离心管底部至液面分布范围为10%〜40%,即造成密度梯度的分布, 越近管底密度越大。离心前把要分离的混合物小心地放在液面上成为很薄的一层,离心开 始时很慢,避免扰乱溶液的密度梯度和加样层。离心后可以分 成区带,最后停止离心。一般在离心管底部开一小孔,分别收集已经按微粒大小分布的区。
(二)平衡等密度区带离心法 此法亦称为平衡等密度离心法。
一 般使用重金属盐(例如铯或铷)来制备梯 度。样品(如DNA)和氯化铯(CsCl)的浓 溶液均匀地混合,离心氯化铯浓溶液产 生一个氯化铯的浓度梯形。由于铯离子 的质量大,因此也就形成了一个密度梯 度,然后在梯度中DNA分子进行分配。 由于离心力的作用把它们赶到了一定的 区域内,在这个区域中溶液的密度等于 DNA分子本身的漂浮密度。这方法在分 析离心中是最常用的。这种方法也已用 于分离和分析人血衆脂蛋白。
(三)梯度溶液的制备
制备液体密度梯度最常用的介质是蔗糖溶液。这种蔗糖溶液可以是缓冲的,也可以不 是缓冲的,有时用重水(D20)来代替水,这样可以得到更好的分离。
必要时,可以根据分离过程的需要来特制梯度,例如:需要高密度和低渗透压的梯度
时,可以用Ficoll(—种蔗糖和环氧氯丙烷的聚合物,分子量为400 000)代替蔗糖。Ficoll 还具有不会渗入细胞膜的优点。重金属盐如铯和铷已被用来制作高密度的梯度。由于氯 化铯具有腐蚀作用,所以含有这种物质的梯度只能在较硬的钛金属转头中使用。
制备离心管内不连续的梯度溶液方法最简便,例如欲制备5ml的4%〜20%的蔗糖溶液 各lml,先将最浓的蔗糖溶液加在离心管底部,依次将较稀蔗糖溶液小心地沿离心管壁逐一加 入,最后加入最稀的蔗糖溶液即成。这种小体积的不连续的梯度瑢液放置一定时间后,由于扩 散作用可减少不连续性,逐渐接近于线性型梯度溶液。现已有制备梯度溶液的梯度仪商品出 售,能迅速制备连续性的梯度溶液,并能同时制备多管梯度溶液,使用方便。
制备直线型梯度溶液,最简单的设备包括两个柱形容器,中间装一连通管,中间连通 管可用活塞或螺旋夹关闭或开放,两边为储存室和混合室,后者内装搅拌器,并有导液管 使混合液流入离心管。盛蔗糖溶液于两个容器内,各含有所需的顶部和底部的不同浓度蔗 糖溶液,由混合室混合的梯度溶液以导液管流入离心管内。这种制备梯度溶液的方法有 二,要根据先把浓的或稀的蔗糖溶液放在混合室中而定。
将较高浓度的蔗糖溶液放在混合室中,较低浓度的蔗糖溶液放在储存室中,这样 从混合室中流出的蔗糖溶液的浓度以线性速率减低。梯度液流出的导管口必须贴靠管壁, 使溶液从管壁流下以避免扰乱已造成的梯度。
将较低浓度的蔗糖溶液放在混合室中,较高浓度的蔗糖溶液放在储存室中,梯度 溶液流出的导管口必须与离心管最底部接触,并靠近管底中心,这样密度较小的稀蔗糖溶 液可被密度较大的浓蔗糖溶液顶浮起来,加完毕后小心将导液管取出。
梯度溶液从混合室流出的速率可用螺旋夹或流出口直径的大小而控制,不宜太快,在 (1)法中,流出速率可高至每分钟2ml,而在(2)法中应较慢,宜控制在每分钟lml。这两个 柱形室中水压应相等,这样开放其间连通管时,不致相互产生对流扰乱。